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Oct 06, 2023

Profili trascrittomici e lipidomici dei tessuti adiposi sottocutanei e viscerali in 15 vertebrati

Dati scientifici, volume 10, numero articolo: 453 (2023) Citare questo articolo

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L'immagazzinamento dei lipidi come energia nel tessuto adiposo (AT) è stato conservato nel corso dell'evoluzione. Tuttavia, sono state segnalate differenze sostanziali nelle attività fisiologiche degli AT tra le specie. Pertanto, stabilire i meccanismi che modellano la divergenza evoluzionistica nei trascrittomi degli AT potrebbe fornire una comprensione più profonda della regolazione dell’AT e del suo ruolo nelle malattie legate all’obesità. Sebbene studi precedenti abbiano effettuato confronti anatomici, fisiologici e morfologici tra AT di specie diverse, attualmente si sa poco a livello fenotipico molecolare. Qui, abbiamo caratterizzato i profili trascrizionali e lipidomici dei campioni di AT sottocutanei e viscerali disponibili in 15 specie di vertebrati, che coprono più di 300 milioni di anni di evoluzione, inclusi mammiferi placentari, uccelli e rettili. Forniamo descrizioni dettagliate dei set di dati prodotti in questo studio e riportiamo l'espressione genica e i profili lipidici nei campioni. Dimostriamo che questi dati sono robusti e rivelano che il trascrittoma AT e il lipidoma variano maggiormente tra le specie che all'interno della stessa specie. Questi set di dati possono servire come risorsa per studi futuri sulle differenze funzionali tra gli AT nelle specie di vertebrati.

Il tessuto adiposo (AT) è uno degli organi più importanti che garantiscono l'omeostasi energetica e metabolica nei vertebrati1. Negli ultimi anni, l’AT ha guadagnato una costante attenzione scientifica a causa del significativo aumento dei tassi globali di obesità e di disordini metabolici nelle popolazioni umane, in particolare del diabete di tipo II e delle malattie cardiovascolari. Studi recenti hanno dimostrato che l'AT è un organo straordinariamente complesso che svolge ruoli importanti nell'immagazzinamento di energia, nella fisiopatologia e in una varietà di processi biologici, come il controllo della pressione sanguigna, la riproduzione e la difesa dell'ospite2,3. L’AT è distribuita in tutto il corpo4 e può essere suddivisa in AT viscerale intra-addominale (VAT) – localizzata attorno all’omento, intestino, gonadi, pericardio e aree perirenali, e AT sottocutanea (SAT) – localizzata nei glutei, nelle cosce e addome. Gli AT provenienti da luoghi diversi hanno proprietà distinte, comprese diverse funzioni metaboliche, ruoli strutturali o associazione con malattie5,6,7,8.

Uno studio precedente ha suggerito che la radice della complessità dell’AT è emersa nel corso dell’evoluzione9 a causa delle differenze nelle proprietà dell’AT tra le specie10, che possono essere valutate eseguendo confronti tra specie. Un recente confronto tra esseri umani e topi ha identificato proporzioni diverse di una sottopopolazione di adipociti che regolano la termogenesi tra le due specie11, spiegando in parte le differenze osservate nell'attività termogenica. Inoltre, analisi comparative del trascrittoma ben documentate tra filogenesi possono far avanzare la medicina traslazionale identificando nuovi bersagli terapeutici12. Ad esempio, uno studio precedente aveva scoperto che il miR-26a, un microRNA coinvolto nella proliferazione dei cardiomiociti, è sottoregolato nei cuori di pesce zebra feriti, ma rimane costante nei topi12. L'inibizione del miR-26a nel cuore dei topi postnatali ha prolungato la finestra proliferativa dei cardiomiociti, indicando che questo miRNA potrebbe essere un bersaglio terapeutico per il trattamento del cuore danneggiato12. Di conseguenza, la valutazione dei cambiamenti dell’AT a livello molecolare tra le specie migliorerà la nostra comprensione della funzione e delle basi genetiche dell’AT e della sua associazione con diverse malattie.

Le informazioni trascrizionali sono importanti per chiarire i fenotipi e la funzione dell'AT, ma finora la maggior parte degli studi si sono concentrati solo sul confronto dell'AT tra esseri umani e roditori13,14,15. È importante sottolineare che per comprendere appieno l'evoluzione trascrittomica dell'AT è necessaria un'analisi trascrittomica comparativa su larga scala tra varie specie lontanamente imparentate e molteplici posizioni anatomiche. A questo scopo, abbiamo eseguito un'analisi trascrittomica comparativa degli AT sottocutanei e/o viscerali disponibili in 15 specie e posizioni di vertebrati (da 1 a 7 per specie) (Fig. 1, Tabella supplementare 1), inclusi 10 mammiferi (primati: umani [ Homo sapiens] e macaco [Macaca mulatta]; roditori: topo [Mus musculus], ratto [Rattus norvegicus] e porcellino d'India [Cavia porcellus]; lagomorfi: coniglio [Oryctolagus cuniculus]; artiodattili: maiale [Sus scrofa] e pecora [ Ovis aries]; e carnivori: gatto [Felis catus] e cane [Canis lupus familiaris]), 4 uccelli (galliformi: pollo [Gallus gallus]; anseriformi: anatra [Anas platyrhynchos] e oca [Anser anser]; e columbiformi: piccione [Columba livia]) e un rettile (testudines: tartaruga [Pelodiscus sinensis]) come gruppo esterno. Abbiamo generato un totale di 59 librerie RNA-seq impoverite di rRNA a coppie e analizzate in combinazione con 48 librerie pubblicate in precedenza 16,17,18,19,20,21, per un totale di 107 librerie (Fig. 1, Tabella supplementare 1 ). La composizione lipidica degli AT può influenzare molteplici aspetti dell'omeostasi energetica, come il metabolismo del glucosio e dei lipidi, la disponibilità del substrato e il dispendio energetico22,23,24,25. Di conseguenza, comprendere le differenze nella composizione lipidica tra gli AT è essenziale per studiare le loro funzioni specializzate ed esplorare i potenziali meccanismi che portano alle eterogeneità degli AT. La lipidomica è stata applicata con successo in precedenza per chiarire i cambiamenti del profilo lipidico degli AT dopo vari trattamenti (come allenamento con esercizi di resistenza26, esposizione al freddo27 e dieta ricca di grassi28) o tra diverse sedi anatomiche29. Tuttavia, i cambiamenti tra le specie rimangono poco compresi. Per ottenere ulteriori informazioni sui cambiamenti metabolici avvenuti durante l'evoluzione dell'AT, abbiamo eseguito analisi non mirate di cromatografia liquida e spettrometria di massa tandem (LC-MS/MS) del lipidoma cellulare di 131 campioni SAT e VAT in cinque specie rappresentative, inclusi quattro mammiferi ( topo, ratto, maiale, pecora) e un uccello (oca) (Fig. 1, Tabella Supplementare 2). Nel complesso, questi set di dati forniscono una risorsa preziosa per lo studio della diversità genetica e metabolica dell’AT tra specie e posizioni anatomiche e un’opportunità senza precedenti per analizzare i cambiamenti molecolari durante l’evoluzione dell’AT.

 7) were used for sequencing. The RNA-seq libraries were then generated using an rRNA depletion method18. All libraries were sequenced on a HiSeq X Ten platform (Illumina) using paired-end sequencing reads of 150 bp in length./p> 0.5 TPM in all replicates of at least one AT./p> 50% of QC samples and > 20% of the replicates of at least one AT. The missing values were imputed using the k-nearest neighbor (KNN) method35,36. Next, the probabilistic quotient normalization (PQN) method37 was performed for data normalization and the QC-robust spline batch correction (QC-RSC) method38 applied to correct for batch effects. Finally, the ions with a relative standard deviation (RSD) > 30% in QC samples were removed, as are fluctuated greatly in the experiment. The retained ions were used in downstream statistical analysis./p>0.5 TPM across all replicates in at least one AT to identify transcribed PCGs for each species, we observed comparable amounts of transcribed PCGs between mammal (~12,324 per species) and bird species (~11,973 per species) (Table 1). However, remarkably few transcribed genes were detected in the ATs of turtle (4037 PCGs), implying the AT transcriptomes of mammals and birds vary significantly from reptiles. To assess the reproducibility of the different biological replicates, we calculated pairwise Spearman’s r of PCGs expression profiles between the samples of each species. In general, gene expression was highly correlated between biological replicates (median Spearman’s r = 0.96), and similarities significantly reduced between the ATs obtained from different anatomical locations within each species (P = 9.76 × 10−16, Wilcoxon rank-sum test) (Fig. 2b). Principal component analysis and hierarchical clustering of the expression levels of 3878 single-copy orthologous PCGs (detailed information is list in file ‘Detailed information on single-copy orthologous PCGs across 15 vertebrate species’ on Figshare41) among 15 vertebrates revealed that samples primarily clustered according to the species with the highest number of biological replicates (Fig. 2c,d and figure ‘PCA plot of PC1 versus PC3 and PC2 versus PC3 based on the expression levels of single-copy orthologous PCGs among 15 vertebrate species’ on Figshare42). These results highlight the consistency among biological replicates and the robustness of experimental design./p>50% of the QC samples (102 QC samples in negative ion mode and 96 QC samples in positive ion mode) and >20% of the experimental samples in at least one AT. To ensure the reliability of the acquired lipidomics data, two quality control steps were performed based on the intensity of the detected ions. First, we assessed the clustering of QC samples using principal component analysis (PCA). In both ion modes, we observed that the QC samples clustered distinctively (Fig. 3b), suggesting absence of significant non-biological induced variation in the experiment. Second, we measured the relative standard deviation (RSD) of detected ions in all QC samples (Fig. 3c). We found that most of the negative (67.42%, 1788 of 2652) and positive ions (81.15%, 3676 of 4530) had an RSD < 30% among the QC samples, indicating ion intensity changed little between QC samples. Overall, these findings confirmed the reproducibility and robustness of the generated lipidomics data./p>

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